在臨床病理檢測中，液基細胞保存液是保障樣本質(zhì)量的關鍵耗材。其核心功能是通過維持細胞形態(tài)完整、減少微生物繁殖，為后續(xù)的細胞學分析提供可靠基礎。然而，實際使用中因操作不規(guī)范導致的樣本污染、細胞變形等問題屢見不鮮。本文將系統(tǒng)梳理從樣本采集到檢測前的全流程操作規(guī)范，聚焦常被忽視的技術細節(jié)。

樣本采集階段的“黃金3分鐘”

采集后需在3分鐘內(nèi)完成樣本轉(zhuǎn)移，超過該時間窗口，細胞膜通透性將發(fā)生不可逆改變。建議使用帶有預置保存液的采樣器，避免空氣接觸引發(fā)的細胞自溶。若采用傳統(tǒng)玻片采集，轉(zhuǎn)移時需垂直浸入保存液，傾斜角度超過15°會導致細胞堆積，影響后續(xù)制片均勻性。

保存液選擇的“隱形門檻”

不同檢測項目對保存液成分有差異化要求。進行HPV分型檢測時，需選用含螯合劑的保存液，以消除血液中的金屬離子干擾；而用于尿脫落細胞學檢查時，應選擇低滲配方，防止細胞過度收縮。值得關注的是，保存液與樣本的體積比需嚴格控制在1:5至1:10之間，比例失衡會直接影響細胞分散度。

操作規(guī)范的“毫米級”要求

在混勻樣本時，需采用“上下翻轉(zhuǎn)8次+水平旋轉(zhuǎn)10秒”的組合動作，力度過猛會造成細胞破裂，力度不足則導致結(jié)團。離心環(huán)節(jié)的轉(zhuǎn)速控制尤為關鍵，建議設置1500rpm持續(xù)5分鐘，轉(zhuǎn)速波動超過±50rpm將顯著影響沉降效果。這些細節(jié)在設備SOP中常被簡化為“充分混勻”，導致操作誤差。

存儲運輸?shù)摹皽囟认葳濉?/p>

液基保存液并非越低溫越好。短期存儲（≤7天）建議4℃冷藏，長期存儲需-20℃冷凍，但需注意復溫時需在25℃環(huán)境靜置2小時，避免溫差驟變引發(fā)細胞膜破裂。運輸過程中，保溫箱需配備實時溫濕度記錄儀，數(shù)據(jù)間隔不得超過15分鐘，確保全程可追溯。

質(zhì)量監(jiān)控的“微觀指標”

除了常規(guī)的pH值和微生物檢測，還需關注保存液的粘度變化。使用旋轉(zhuǎn)粘度計在25℃環(huán)境下檢測，合格范圍應為1.2-1.8mPa·s。當粘度低于1.2mPa·s時，提示可能發(fā)生水解變質(zhì)；高于1.8mPa·s則會影響細胞分散。這些指標在常規(guī)質(zhì)檢中常被忽視，卻是保障檢測一致性的關鍵。

液基細胞保存液的規(guī)范使用是病理質(zhì)控的起點。從接觸樣本的瞬間到進入檢測流程，每個操作細節(jié)都需建立量化標準。實驗室可通過制作標準化操作視頻、配備帶刻度的混勻計時器、引入粘度快速檢測卡等工具，將文本規(guī)范轉(zhuǎn)化為可執(zhí)行的流程控制點，真正實現(xiàn)樣本質(zhì)量的全程可控。